總有一些細心、周到的人，在科研實驗中發(fā)現(xiàn)小竅門和總結小經驗，很容易就能處理一些常見問題。關于關注細胞培養(yǎng)的小伙伴們，以下總結對您有或多或少的幫助！

細胞培養(yǎng)前的準備 

在您帶上手套開始細胞培養(yǎng)之前,先檢查一下移液管和瓶子的數(shù)量是否充足,以免在開始實驗后再次出入操作臺。

這樣可以降低細胞污染的風險。

細胞培養(yǎng)基也應先預熱,選擇只預熱部分培養(yǎng)基而非整瓶加熱,不但可以節(jié)約實驗時間,而且可以避免因反復加熱培養(yǎng)基而造成的蛋白質降解。

結束操作后,別忘了培養(yǎng)基對光敏感,應盡可能避光保存。

細胞培養(yǎng)的定期檢查

定期檢查培養(yǎng)細胞的形態(tài)，即形狀和外觀，對于細胞培養(yǎng)實驗取得成功至關重要。

除確認細胞的健康狀態(tài)外，每次操作細胞時通過肉眼和顯微鏡檢查細胞還可早期發(fā)現(xiàn)污染征象，避免污染擴散至實驗室其他細胞。

細胞變質的征象

細胞變質的征象包括核周出現(xiàn)顆粒、細胞與基質解離以及細胞質空泡形成。

這些變質征象可能為多種原因所致，例如：

培養(yǎng)物污染、細胞系衰老或培養(yǎng)基中存在毒性物質，或者這些征象僅表明培養(yǎng)物需要更換培養(yǎng)基。

變質嚴重時將會成為不可逆的變化。

細胞培養(yǎng)通風櫥的消毒及布局

保持細胞培養(yǎng)通風櫥內的整潔有序，將所有物品置于直視范圍內。

向放入通風櫥內的所有物品噴灑70%乙醇，擦拭清潔進行消毒。

在通風櫥中部開闊處放置細胞培養(yǎng)容器；移液器置于右前方易于取用；試劑和培養(yǎng)基置于右后方便于吸??；試管架置于中后部；小型容器置于左后部用于盛放廢液。

培養(yǎng)瓶/皿等物品的無菌操作

無菌培養(yǎng)瓶、試劑瓶、培養(yǎng)皿等物品使用時方可揭開蓋子，不得將其開放暴露于環(huán)境中，操作完成后盡快蓋上蓋子，取下蓋子時應將蓋子開口朝下放在工作臺面上。

進行無菌操作時不要說話、唱歌或吹口哨。盡快完成實驗，以盡量避免污染。

細胞培養(yǎng)中可能的污染物

細胞培養(yǎng)污染物主要分為兩類：

化學污染物,如培養(yǎng)基、血清和水中的雜質、內毒素、增塑劑和去污劑；

生物污染物，如細菌、霉菌、酵母、病毒、支原體以及其他細胞系的交叉污染。

可通過充分了解污染源以及采用良好的無菌技術，降低污染發(fā)生的頻率和嚴重程度。

交叉污染的確認

交叉污染雖不如微生物污染普遍，但與HELA細胞及其他生長迅速的細胞系間廣泛的交叉污染是個明確的問題，會造成嚴重后果。

從聲譽好的細胞庫獲取細胞系、定期檢查細胞系性質及采用良好的無菌技術有助于避免交叉污染。

通過DNA指紋圖譜、核型分析和同位素分析可確認有無交叉污染。

細胞換液注意事項

為細胞換液時，要沿著培養(yǎng)瓶的一側輕輕地加入，而不是直接加到細胞中，以免損傷細胞，當培養(yǎng)的細胞株較為脆弱時尤其需要注意。

使用無菌玻璃吸管或一次性塑料吸管和移液器操作液體時，每支吸管只能使用一次，以免交叉污染。

細胞傳代的時間把握

當細胞呈指數(shù)增殖，貼壁培養(yǎng)的細胞已占據(jù)所有可用基質、沒有擴增空間，或懸浮培養(yǎng)的細胞已超過培養(yǎng)基質所支撐的能力，無法進一步生長時，細胞增殖速度將大大降低甚至*停止。

為了將細胞密度維持的非常好，以便細胞繼續(xù)生長，并且刺激進一步增殖，必須對細胞進行傳代。

細胞培養(yǎng)中使用抗生素的注意事項

細胞培養(yǎng)時不應長期使用抗生素，因為連續(xù)使用抗生素會促進抗生素耐藥性細胞株的產生，導致輕度污染持續(xù)存在。

抗生素只能作為對付污染的后手段短期使用，并盡快撤除。

如果長期使用抗生素，則應同時進行無抗生素培養(yǎng)，以便作為鑒別隱性感染的對照。

細胞凍存的必要性

連續(xù)培養(yǎng)的細胞系容易發(fā)生遺傳漂變，有限細胞系終會發(fā)生衰老，所有培養(yǎng)的細胞都易受到微生物污染，即使運轉不錯的實驗室也會遇到設備故障的問題。

由于已建立的細胞系是一種寶貴資源，更換細胞系成本高昂，而且耗費時間，因此，必須將其冷凍起來，長期保存。

細胞凍存的事項

應在細胞濃度高的情況下進行細胞培養(yǎng)凍存，并且細胞傳代的次數(shù)盡可能少。

在凍存前確?；罴毎陌俜直戎辽贋?0%。

請注意，凍存條件取決于所用細胞系。

凍存和復蘇過程對大多數(shù)細胞都會造成不利影響，因此不要通過渦旋震蕩或者用力敲打培養(yǎng)瓶的方法使細胞脫落（培養(yǎng)昆蟲細胞時除外），也不要高速離心細胞。

凍存培養(yǎng)基的選擇

凍存細胞時必須選擇凍存培養(yǎng)基。

凍存培養(yǎng)基中應含有DMSO或者甘油等冷凍保護劑。

還可使用專門配制的*凍存培養(yǎng)基，例如HyClone、Gibco的細胞凍存培養(yǎng)基。

細胞培養(yǎng)溫度的設定

細胞培養(yǎng)的溫度主要取決于細胞供體的體溫，此外也受到解刨部位體溫差異的影響，例如：皮膚溫度低于骨骼肌的溫度。

與溫度過低相比，細胞培養(yǎng)時溫度過高時更為嚴重的問題：因此，往往將培養(yǎng)箱的溫度設定為略低于常用溫度。

各類細胞培養(yǎng)的溫度

大多數(shù)人和哺乳動物細胞系在36℃至37℃下具有很好的生長狀態(tài)。

昆蟲細胞在27℃具有很好的生長狀態(tài)；在低于27℃以及27至30℃范圍內，細胞生長較慢。

溫度超過30℃時，昆蟲細胞活力降低，即使溫度降至27℃，細胞活力也無法恢復。

禽類細胞系在38.5℃時具有不錯的生長狀態(tài)。雖然此類細胞也可在37℃下培養(yǎng)，但其生長速度會變慢。

來源于冷血動物（例如：兩棲動物、冷水魚）的細胞系可耐受很寬的溫度范圍，為15-26℃。

請注意每種細胞的培養(yǎng)條件均有所不同，偏離某種細胞所需的培養(yǎng)條件會導致細胞表型異常，甚至培養(yǎng)*失敗。

因此，我們建議您應熟悉自己使用的細胞系，實驗中嚴格遵守所有產品附帶的操作說明。

細胞培養(yǎng)的合適pH

大多數(shù)正常的哺乳動物細胞系都能在pH值為7.4的環(huán)境中生長為良好，而且不同細胞株間差異極小。

但是，目前發(fā)現(xiàn)有些轉化細胞系在輕度偏酸性的環(huán)境中即pH7.0-7.4時生長較好，而有些正常的成纖維細胞系更適合輕度偏堿性的環(huán)境即pH為7.4-7.7。

Sf9和Sf21等昆蟲細胞系適合在pH值為6.2的環(huán)境中生長。

細胞培養(yǎng)基合適pH的控制

細胞培養(yǎng)基可控制培養(yǎng)體系的pH值，為培養(yǎng)的細胞緩沖pH值的變化。

這種緩沖作用通常是通過添加有機緩沖鹽（例如：HEPES）或者二氧化碳-碳酸氫鹽緩沖鹽實現(xiàn)。

由于培養(yǎng)基的pH值取決于溶解態(tài)二氧化碳與碳酸氫鹽間的精密平衡，因此空氣中二氧化碳含量的變化會改變培養(yǎng)基的pH值。

為此，使用二氧化碳-碳酸氫鹽緩沖鹽培養(yǎng)基時必須使用外源性二氧化碳，特別是使用開放式培養(yǎng)皿培養(yǎng)細胞或者進行高濃度的轉化細胞系培養(yǎng)時。

細胞培養(yǎng)中血清的保存

細胞培養(yǎng)中所用的血清不盡相同。

您需要根據(jù)您所培養(yǎng)的細胞種類和培養(yǎng)要求來挑選出適合的血清。

我們建議將血清保存在-10至-20℃，若存放于4℃，請勿超過一個月。

若您無法一次用完一瓶，建議您將血清無菌分裝至合適體積的滅菌容器內，再放回冷凍箱保存。

解凍血清時，建議您將血清從冷凍箱取出后，先置于2-8℃冰箱過夜融解，然后在室溫下使之全融。需要注意的是，融解過程中必須規(guī)則地搖晃均勻。

如何在細胞鋪板時避免“邊緣效應”

細胞實驗鋪板時，為避免“邊緣效應”，以應用96孔板的中間60孔為良好的位置，一般四周的一圈邊緣孔不養(yǎng)細胞，只做空白或陰性對照。

鋪板時，細胞懸液一定要混勻，以避免細胞沉淀下來而導致每孔中的細胞數(shù)量不等，可以每接幾個就再混勻一下。

加樣器操作要熟練，盡量避免人為誤差。

此外，吹散次數(shù)過多也會影響細胞活力。所以要熟練操作，盡快上板。

何時選擇使用熱滅活血清

加熱血清可以滅活補體系統(tǒng)。

啟動的補體參與溶解細胞事件，刺激平滑肌收縮，細胞和血小板釋放組胺，啟動淋巴細胞和巨噬細胞活化。

在免疫學研究、培養(yǎng)ES細胞、昆蟲細胞和平滑肌細胞時，推薦使用熱滅活血清。

熱滅活血清可能出現(xiàn)的現(xiàn)象

在免疫學研究、培養(yǎng)ES細胞、昆蟲細胞和平滑肌細胞時，推薦使用熱滅活血清。

而對于其他大多數(shù)的細胞來說是不需要熱滅活血清的。

熱滅活血清對細胞的生長只有微小的促進，或*沒有任何作用，甚至可能因為高溫處理影響了血清的質量，而造成細胞生長速率的降低；經過熱處理的血清，沉淀物會顯著地增多，這些沉淀物在倒置顯微鏡下觀察，像是“小黑點”，常常會讓研究者誤以為是血清遭受污染，而把血清放在37度環(huán)境中，又會使此沉淀物增多，使研究者誤認為是微生物的分裂擴增。

您可以根據(jù)您的研究需要選擇是否需要熱滅活血清。

如此一來，不但能確保血清的質量，而且能夠節(jié)省您寶貴的時間。

如何正確熱滅活血清

熱滅活時請將血清置于56水浴30分鐘。

為盡量減少熱滅活對血清品質的影響，一次滅活的血清體積不宜過大。

準備同樣的容器裝相等體積的水（與血清相同溫度），滅活時將裝有血清和水的容器同時放入56度水浴，在裝水的容器中放置溫度計，加熱過程中不時地輕輕旋轉混勻血清，當溫度計顯示達到56度左右，開始計時。

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